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细胞转染的原理、操作步骤以及小技巧：脂质体转染操作步骤：(1)细胞培养：取6cm细胞皿，向每孔中加入2mL含1~2×105个细胞培养液，37℃CO2培养密度至40%~60%，密度过大，转染后不利筛选细胞。(2)转染液制备：在EP管中制备以下两液(为转染每一个孔细胞所用的量)A液：用不含血清培养基稀释1ug质粒DNA。B液：用不含血清培养基稀释2ul脂质体。分别将A液与B液轻弹混匀，静置5分钟。(3)吸取B液加入至A液中，轻弹混匀。室温中置10-15分钟。(4)转染准备：用1mL不含血清培养液漂洗两次，再加入4mL不含血清培养液。(5)转染：把A/B复合物缓缓加入培养液中，摇匀，37℃温箱置6~24小时，吸除无血清转染液，换入正常培养液继续培养。(6)瞬时转染后，可在48h-72h细胞长满之后，提取细胞蛋白或者RNA，验证敲减/过表达效率。重新接种于培养皿或瓶，较好在转染前4小时换一次新鲜培养液。珠海细胞高效转染试剂厂家推荐

细胞转染：(1)转染试剂的准备A.将400ul去核酸酶水加入管中，震荡10秒钟，溶解脂状物。B.震荡后将试剂放在-20摄氏度保存，使用前还需震荡，。(2)选择合适的混合比例(1：1-1：2/脂质体体积：DNA质量)来转染细胞。在一个转染管中加入合适体积的无血清培养基。加入合适质量的MyoD或者EGFP的DNA，震荡后在加入合适体积的转染试剂，再次震荡。(3)将混合液在室温放置10—15分钟。(4)吸去培养板中的培养基，用PBS或者无血清培养基清洗一次。(5)加入混合液，将细胞放回培养箱中培养一个小时。(6)到时后，根据细胞种类决定是否移除混合液，之后加入完全培养基继续培养24-48小时。成都正规细胞高效转染试剂厂家现货震荡后将试剂放在－20摄氏度保存，使用前还需震荡。

细胞转染方法：1.脂质体转染法阳离子脂质体表面带正电荷，能与核酸的磷酸根通过静电作用，将DNA分子包裹入内，形成DNA脂复合物，也能被表面带负电的细胞膜吸附，再通过融合或细胞内吞进入细胞。脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中，是目前实验室较方便的转染方法之一，其转染率较高，优于磷酸钙法。由于脂质体对细胞有一定的毒性，所以转染时间一般不超过24小时。常用细胞类型：cos-7、BHK、NIH3T3、Hela等2.电穿孔转染法电流能够可逆地击穿细胞膜形成瞬时的水通路或膜上小孔促使DNA分子进入胞内，这种方法就是电穿孔。当遇到某些脂质体转染效率很低或几乎无法转入时建议用电穿孔法转染。一般情况下，高电场强度会杀死50%-70%的细胞。现在针对细胞死亡开发出了一种电转保护剂，可以较大的降低细胞的死亡率，同时提高电穿孔转染效率

细胞转染的常用方法：磷酸钙共沉淀原理：该法可用于瞬时或稳定转染。然而因其对pH、温度和缓冲液盐浓度的微小变化十分敏感，所得结果容易出现差异，且对许多类型的细胞培养物(尤其是原代细胞)具有细胞毒性，转染效率较差。实验步骤：将核酸与氯化钙在磷酸盐缓冲液中混合，同时控制好pH、温度等条件→室温孵育，生成浓缩DNA的极小不溶性颗粒沉淀→将颗粒型沉淀分散到细胞中，促进DNA粘附在细胞表面→共沉淀通过内吞作用进入胞浆→分析细胞瞬时基因表达或者选择稳定性传染。瞬时转染与稳定转染常规转染技术根据基因表达时间的长短可分为两大类。

影响转染试验的因素：细胞状态变化：（1）转染试剂与细胞不匹配细胞转染较适合的不是原代细胞，也不是传代很多次的细胞。这是因为细胞培养在实验室中保存数月和数年后会经历突变，总染色体重组或基因调控变化等而演化。这会导致和转染相关的细胞行为的变化。较适合转染的细胞是经过几次传代后达到对数生长期的细胞，细胞生长旺盛，较容易转染。（2）把握时机没错！转染也有适当的时机，相比较非分裂细胞——分裂细胞往往要比静止细胞更易于摄取并表达外源DNA。因此对大多数转染操作而言，细胞都在转染当天或前现在种板。同样重要的是细胞在种板进行转染时不应处于过度生长的状态，如细胞数量过多，互相叠加，营养物质耗竭，代谢废物积聚，转染率低下也是很正常的！转染试剂的准备①将400ul去核酸酶水加入管中，震荡10秒钟，溶解脂状物。芜湖正规细胞高效转染试剂供应商

到时后，根据细胞种类决定是否移除混合液。珠海细胞高效转染试剂厂家推荐

转染的注意事项：培养基中的物品物品，比如青霉素和链霉素，是影响转染的培养基添加物。这些物品一般对于真核细胞无毒，但阳离子脂质体试剂增加了细胞的通透性，使物品可以进入细胞。这降低了细胞的活性，导致转染效率低。所以，在转染培养基中不能使用物品，甚至在准备转染前进行细胞铺板时也要避免使用物品。这样，在转染前也不必润洗细胞。对于稳定转染，不要在选择性培养基中使用青霉素和链霉素，因为这些物品是GENETICIN选择性物品的竞争性克制剂。另外，为了保证无血清培养基中细胞的健康生长，使用比含血清培养基更少的物品量。大多数已建立的细胞系都是非整倍体，原代培养包括了表达不同基因组合的细胞的混合物。细胞培养在实验室中保存数月和数年后会经历突变，总染色体重组或基因调控变化等而演化，这会导致和转染相关的细胞行为的变化。如果随时间发现这种变化，融化一管新鲜的细胞可能会恢复原先的转染活性。比如，新鲜融化的NIH3T3细胞比传代8次的细胞表现出更高的转染效率，融化细胞的进一步传代并没有降低转染效率。因此，如果观察到转染效率降低，可以试着转染新鲜培养的细胞以恢复较佳结果。珠海细胞高效转染试剂厂家推荐