文章作者按照经典的慢病毒载体生产流程操作，在融化、核酸酶消化、澄清、超滤等步骤留样，分别检测dsDNA浓度及功能性LV病毒滴度。经过分析发现，——去除主要发生在澄清环节，能去除dsDNA的80%-90%；2. M-SAN HQ中盐核酸酶比Benzonase能更高效去除dsDNA，即M-SAN HQ组的TFF回流液中dsDNA残留量是Benzonase组回流液的20%左右；3. LV病毒滴度在澄清环节损失30%-40%；4. M-SAN HQ组的TFF回流液中LV病毒滴度略高于Benzonase组的回流液数据。在细胞培养液或收获的培养上清中，不需调整任何组分，M-SAN HQ中盐核酸酶即可表现较高核酸酶活性。河南上海倍笃生物中盐核酸酶70950-202
经典的慢病毒载体（LV）的生产工艺如下，——三质粒系统瞬时转染HEK293细胞系，转染24小时后LV由转染阳性细胞生产并排出到培养上清液中；收获上清培养液后，加入核酸酶去除HCD污染，通过澄清步骤去除大的细胞碎片等杂质；下游纯化步骤分离LV载体，纯化方法包括切向流过滤TFF、色谱纯化及超速离心；纯化后的LV病毒颗粒经过无菌过滤，更换到优化后的配方中，灌装并冷冻保存。每批Car-T生产时取对应量的LV病毒，切忌反复冻融，否则LV病毒会失活。甘肃M-SAN中盐核酸酶70950-150US FDA指南要求：重组biologics终产品中，核酸杂质含量低于10ng/dose。
宿主细胞DNA（HCD）残留以染色质形式存在，其中有带负电荷的DNA、带正电荷及疏水区段的组蛋白，就像胶带一样能够吸附很多物质，包括各种杂蛋白、色谱填料、目的病毒颗粒。非特异吸附杂蛋白，会影响蛋白杂质（如HCP）等的去除；吸附到色谱填料上，会降低色谱分离纯化效率；吸附到目的病毒颗粒时，会影响目的产物的稳定性，从而降低目的产物的得率。因此，从生产工艺层面来讲，一定要去除HCD，从而能够简化工艺、提高目的产物的产量。
基因药物常用的AAV载体有三种生产方法，分别是三质粒瞬转体系、杆状病毒表达载体体系和包装细胞体系。其中，20多年前开发的三质粒瞬转表达技术仍然占据腺相关病毒AAV生产的主流地位，其三质粒分别是Helper质粒（含E2a/b、E4和VARNA基因）、目标基因表达质粒及辅助质粒（含Cap和Rep基因）。虽然AAV病毒载体的血清型不同，但AAV的生产流程基本一致，主要有质粒共转宿主细胞HEK293、293细胞生产病毒颗粒、从细胞培养上清或/及细胞裂解液中收获病毒载体、纯化/制剂/无菌过滤/灌装等流程。M-SAN HQ ELISA kit规格是12*8 strip，提高使用效率。
文章作者对酶法去除dsDNA进行了优化研究，两种酶浓度梯度为25U/ml、50U/ml及100U/ml，Mg2+浓度为5mM，通过PicoGreen检测dsDNA含量。结果发现，25U/ml的M-SAN HQ中盐核酸酶对dsDNA去除效果明显优于100U/ml的Benzonase。此外，在酶切反应速度方面，M-SAN HQ有更明显的优势，——在低浓度底物dsDNA（如20ng/ml）条件下，50U/ml的M-SAN HQ在5分钟内将dsDNA降解到2ng/ml左右；而50U/ml的Benzonase在30分钟孵育消化后，dsDNA浓度依然是12ng/ml左右。M-SAN HQ中盐核酸酶终产品经过0.22µm过滤；甘肃M-SAN中盐核酸酶70950-150
琼脂糖胶结果显示，M-SAN HQ中盐核酸酶能将HCD消化成小于8nt的片段。河南上海倍笃生物中盐核酸酶70950-202
在干细胞医治领域， 某些疾病靠单纯的细胞替代并不能取得满意效果。利用逆转录病毒和慢病毒将外源目的基因整合到干细胞基因组，对基因功能缺失的遗传病具有良好疗效，但也存在一定致瘤风险。相比之下，CRISPR/Cas9基因编辑技术能够精确实现基因敲入、敲除及碱基修复。因此， 采用CRISPR/Cas9基因编辑技术对干细胞进行基因改造，不仅能够增加干细胞医治的疾病范围，也能更大程度地保证疗效的安全性。目前，CRISPR/Cas9在干细胞医治领域发挥着重要作用，同时更多由CRISPR/Cas9编辑的干细胞药物正在开发中。河南上海倍笃生物中盐核酸酶70950-202
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