脂质体质量控制的重要性与常规药物剂型(如⼩分⼦注射溶液)不同,脂质体中装载的***性分⼦在全⾝给药后(如静脉注射)转运到肿瘤细胞的过程更为复杂主要经历以下⼏个步骤:(1)从⾎管内间隙外渗到组织间质:脂质体通过扩散和/或对流穿越**⾎管壁不连续的内⽪连接点(100nm-2µm)进⼊**间质。同时⼀部分脂质体被MPS从体循环中***,特别是对于⼤尺⼨(>200nm、疏⽔和带电颗粒表⾯(带负电荷或正电荷)的颗粒。(2)通过扩散和对流进⾏间质运输,以接近单个肿瘤细胞。利⽤主动靶向对脂质体进⾏表⾯修饰将克服颗粒在细胞外基质(ECM)中扩散的物理阻⼒,因为颗粒上的靶向配体与肿瘤细胞表⾯的受体之间产⽣了更⾼的亲和⼒(3)通过⾮特异性或特异性结合的⽅式附着于细胞膜(4)通过内吞作⽤、膜融合或扩散进⼊细胞。内吞作⽤的途径取决于颗粒⼤⼩即⼤⼩为200nm,500nm的颗粒为⽹格蛋⽩介导的内吞作⽤和⼩泡介导的内吞作⽤,⼤胞吞作⽤可达5µm。(5)细胞内转运和药物释放。基于脂质体的这种运输过程由于循环脂质体颗粒⽆法穿过⼼脏⾎管的连续内⽪连接,与传统的阿霉素给药相⽐,Doxil明显降低了⼼脏毒性。与常规药物相⽐DaunoXome可使多柔⽐星的**递送量增加约10倍,并在体内提供持续释放。脂质体质量控制的重要性。武汉脂质体载药包裹药物
载药脂质体如何纯化如果需要纯化载药脂质体,通常会根据载药脂质体的性质和所需纯度要求选择合适的纯化方法。以下是一些可能的纯化方法:1.超滤法:超滤可以用于去除较大的杂质和未包埋的药物。通过选择适当的分子量截止膜,将载药脂质体溶液经过超滤膜,较大的杂质和未包埋的药物将被截留,而较小的载药脂质体颗粒则通过膜孔。2.凝胶过滤法:凝胶过滤可以利用凝胶材料的孔隙大小分离分子。将载药脂质体溶液加入到凝胶柱中,通过洗脱的方式,较小的载药脂质体颗粒会通过凝胶柱,而较大的杂质则会被截留在柱中。3.离心法:离心可以将载药脂质体颗粒沉淀到底部,去除上清液中的杂质和未包埋的药物。将载药脂质体溶液进行高速离心,使载药脂质体颗粒沉淀到离心管底部,然后去除上清液中的杂质和未包埋的药物。4.柱层析法:柱层析可以利用吸附剂对溶液中分子的亲和性分离。将载药脂质体溶液通过填充有吸附剂的柱子,通过洗脱的方式,使载药脂质体颗粒和杂质分离出来。5.其他方法:根据具体情况,还可以考虑其他纯化方法,如凝胶电泳法等。选择合适的纯化方法需要考虑载药脂质体的性质、所需纯度要求以及纯化效率等因素。通常会结合多种方法进行纯化,以达到所需的纯度和纯净度。天津载药脂质体载药脂质体的粒径和粒径分布的检测。
递送核酸的脂质体中的脂质成分脂质体的脂质组成可以影响阳离子脂质的结构性质及其转染效率。由3β[N(N',N'Dimethylaminoethane)carbamoyl]cholesterol,(DC-Chol)和DOPE组成的阳离子脂质体被认为是高效基因传递的代表性脂质体。对于质粒DNA传递,DC-Chol与DOPE的***摩尔比被发现为1:2。质粒DNA的转染效率随着DC-Chol与质粒DNA质量比的增大而降低,比较高转染效率为3:1。**近的一项研究报道了不同的内吞途径对阳离子脂质体组成的可能依赖性。由质粒DNA加DC-Chol或DOPE为基础的阳离子脂质组成的脂质体优先通过内吞作用进入细胞,而包括1,2-二酰-3-三甲基丙烷胺(DOTAP)或DistearoylPhosphatidylcholine(DSPC)为基础的阳离子脂质体的脂质体则被非特异性的液相巨胞饮作用所吸收。
非病毒载体通常具有比病毒载体更低的转染效率,但由于它们被认为要安全得多,因此已被***研究。纳米颗粒递送系统,其中阳离子脂质纳米颗粒通过核酸的负磷酸基团装载,是一类主要的非病毒载体,显示出高生产力和装载效率。用于携带核酸的纳米颗粒系统在整体上可分为基于脂质或聚合物的纳米颗粒,在与核酸相互作用后,每种纳米颗粒都被称为“脂质复合物”或“多聚体”。这些复合物的细胞递送被认为是通过内吞作用发生的,然后内体逃逸到细胞质中。阳离子脂质体作为核酸的一种传递系统,具有一定的优势。首先,阳离子脂质体在体内给药后是可生物降解的。内源性酶的存在可以分解脂质体的脂质成分。脂质体在各种纳米载体之间****的生物相容性导致在体内研究中使用阳离子脂质体递送各种sirna。脂质组成依赖性的表面电荷密度调节可以控制与带负电的核酸的相互作用力。聚乙二醇化脂质或功能性脂质的包含可以使脂质体的多种表面修饰成为可能。此外,在阳离子脂质体的脂质双层中包含亲脂性化学药物可以提供***药物和***性核酸的共递送。鉴于阳离子脂质体的优势,人们已经研究了阳离子脂质体用于递送各种核酸,如质粒DNA、反义寡核苷酸和siRNA。载药脂质体可以采用超滤法、凝胶过滤法、低速离心法、透析法等多种方法来纯化。
脂质体配方中脂类的毒性由于LNPs主要由天然脂质组成,它们被认为是无药理活性和毒性**小的。然而,在某些情况下,LNP并非免疫惰性,而LNP成分是可能对人体细胞有毒的非天然化合物。例如,虽然阳离子脂质作为递送脆弱化合物(如核酸)的载体提供了巨大的希望,但一些阳离子脂质会引起细胞毒性。在某些情况下,阳离子脂质会减少细胞中的有丝分裂,在细胞的细胞质中形成液泡,并对关键的细胞蛋白如蛋白激酶c造成有害影响阳离子脂质的细胞毒性取决于它们的结构亲水头基团;具有季铵头基的两亲化合物比具有叔胺头基的两亲化合物毒性更大。疏水链对脂质毒性的影响还没有得到很好的研究,阻碍了低毒性脂质的设计。脂质分子的疏水部分强烈调节其相行为及其对LNP的有用性,但某些脂质相的存在也与膜损伤和细胞毒性有关。PEG-脂质偶联物也可能引起意想不到的毒性,而已知含有PEG-脂质偶联物的LNPs与免疫细胞相互作用,产生针对某些聚乙二醇化脂质的不想要的抗体。核酸与化学增敏剂在阳离子脂质体共同递送。天津载药脂质体载药
Arg-Gly-Asp (RGD)肽修饰的脂质体增强核酸靶向整合素受体表达细胞传递的能力。武汉脂质体载药包裹药物
由于阿⽶卡星在⼄醇中的溶解度有限,在使⽤⼄醇输注制备脂质体过程中,阿⽶卡星转移到半可溶性的凝聚状态,被包裹在脂质体的核⼼内部。令⼈惊讶的是,获得了较⾼的包封效率(在优化的制备参数下,游离药物为5.2%)和药脂⽐(~0.7)。由于其多阳离⼦性质,被包封的药物在脂质体膜上表现出低通透性,使脂质体在⾎液循环过程中保持稳定。阿糖胞苷(DepoCyte)、**(DepoDur)和布⽐卡因(Exparel)⽔溶液被包裹在MVLs 的腔室中(由94%的⽔腔和4%的脂质组成);因此,⼩体积的脂质体悬浮液中含有⼤量药物。为了进⼀步提⾼包封效率和缓释,可采⽤将药物化合物从单质⼦⽆机酸盐转化为⼆质⼦或三质⼦⽆机酸盐(如硫酸盐盐或磷酸盐)和多醇有机酸共包封的⽅法。武汉脂质体载药包裹药物
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