脂质体靶向递送中叶酸配体修饰脂质与生物活性小分子(如叶酸)的结合已被研究用于靶向递送核酸。例如，由叶酸与1-棕榈酰-2-油酰-sn-甘油-3-非共价结合而形成的脂质体乙基磷脂胆碱:胆固醇脂质体显著提高胸苷激酶质粒DNA转染效率，抑制体外TSA和SCC7细胞生长。这些叶酸相关的脂质体在移植SCC7**的小鼠中显示出较高的抗**效果。在另一种方法中，叶酸标记的阳离子脂质体与小牛胸腺DNA复合物***巨噬细胞，与不含叶酸的普通阳离子脂质体相比，显示出更高的DNA叶酸受体表达细胞的递送。在荷瘤小鼠中，与不含叶酸的脂质体相比，叶酸标记的脂质体诱导干扰素-g和白细胞介素-6的产生，延长了存活时间。甘草次酸已被用于靶向肝细胞肝*细胞，基于一项研究表明，与邻近的非**肝细胞相比，甘草次酸的结合靶点蛋白激酶C在肝细胞*细胞表面的表达更高。合成了甘次酸-次酸-聚乙二醇-聚胆甾醇缀合物,并将其与DOTAP和胆固醇配制成阳离子脂质体。这些脂质体与表达GFP的质粒DNA形成复合物的能力更高，并且与缺乏甘次酸的对照阳离子Lipo脂质体相比，能增强质粒DNA转染至肝*细胞的能力。一些常用于标记脂质体的荧光染料包括：DiO、DiI、Rhodamine PE、NBD、BODIPY、Cy3和Cy5等。长循环脂质体载药供应
4.脂质体的性质：脂质体的形态、大小、表面电荷等性质会影响药物的载药率。例如，小尺寸的脂质体通常具有较高的表面积，有利于药物的扩散和溶解。5.药物与脂质体的相互作用：药物与脂质体之间的相互作用形式也会影响载药率，例如药物与脂质质体之间的静电相互作用、疏水相互作用等。评估脂质体的载药率通常需要进行药物释放实验或者溶解度测定等试验，以确定药物在脂质体中的含量或者释放速率。通过优化脂质体的组成和制备方法，可以提高脂质体的载药率，从而增强其在药物传递等应用中的效果。西藏石家庄脂质体载药含有DOTAP、胆固醇和DSPC-PEG2000的阳离子脂质体可以递送microRNA 。
固体脂质纳米颗粒和纳米结构脂质载体虽然脂质体作为药物载体是有用的，但它们需要使用有机溶剂的复杂生产方法，在包裹药物方面表现出低效率，并且难以大规模执行。固体脂质纳米颗粒(SLN)和纳米结构脂质载体(NLC)的开发是为了解决这些缺点。传统的脂质体由液晶脂质双层组成，而SLN由固体脂质组成，和NLC由固体和液晶脂质混合物组成。SLN和NLC的粒径在40~1000nm之间。SLN和NLC表现出增强的物理稳定性，解决了脂质体基础配方的主要限制之一。SLN和NLC还具有更高的装载能力和更高的生物利用度，不需要使用有机溶剂就可以大规模生产，并且比其他LNPs更稳定。此外，分子在固体状态下迁移率的降低使得SLN和NLC能够更精确地控制其药物有效载荷的释放。然而，在长期储存中，SLN的结晶可以将掺入的药物排出到周围介质中
microRNA脂质体
microRNA是真核细胞中发现的短(约22mer)非编码RNA，通过结合互补的mRNA序列发挥生物调节剂的作用。miRNA以初级miRNA的形式从其编码的核基因转录，其长度为数百个核苷酸。RNaseIII酶，Drosha，将初级miRNA加工成pre-miRNA(长度为70个核苷酸)，携带一个特征的发夹环。然后pre-miRNA移动到细胞质中，在那里RNaseIII酶Dicer产生成熟的miRNA和乘客链。***，成熟的miRNA被整合到RNAi诱导的沉默复合体中，以降解它们的靶mRNA。由DOTMA、胆固醇和vitaminETPGS1k琥珀酸盐组成的阳离子脂质体被证明可以有效递送pre-miRNA-133b,导致A549非小肺*细胞中成熟miRNA-133b的表达比对照组细胞增加2.3倍，Mcl-1蛋白的表达减少1.8倍。经尾静脉注射含有pre-miRNA-133b的阳离子脂质体(1.5mg/kg)的ICR小鼠肺组织中成熟miRNA-133b的表达比接受含有紊乱的pre-mirna的阳离子脂质体的小鼠高52倍。 PAMAM树状大分子偶联，与DOPE(1:1)混合形成脂质体具有细胞核靶向功能。
**近的另一项研究表明，全身递送携带**抑制因子miRNA的阳离子脂质体具有*****的潜力。MiRNA-34a是p53转录网络的一个组成部分，可调节**干细胞存活，因此被选为**抑制因子，而miR-143/145簇已知可抑制KRAS2及其下游效应物ras- 响应元件结合蛋白-1的表达。将含有DOTAP、胆固醇和DSPC-PEG2000的阳离子脂质体与miRNA-34a或miRNA-143/145络合为阳离子脂质复合体。在皮下异种移植模型和原位胰腺*异种移植模型中， 静脉注射该阳离子脂质复合体***抑制**生长。核酸与化学增敏剂在阳离子脂质体共同递送。江西DLinMC3DMA脂质体载药
阳离子脂质体提高siRNA的细胞递送和基因沉默效率。长循环脂质体载药供应
脂质体疫苗通常在已知疫苗中使用纯化抗原或减毒病原体作为免疫原。然而，长期的免疫反应可能不会由纯化抗原诱导，甚至有时根本不会诱导反应。另一方面，减毒疫苗可以在免疫的患者中产生应答。然而，递送包裹在脂质体内的抗原可诱导长期应答，这在某些抗原的直接免疫中没有观察到。研究表明，恶性细胞的细胞膜可以形成包封潜在抗原的脂质体。文献报道了包封在脂质体中的肽作为**疫苗的***应用能力。有研究评估了BLP25(一个含有合成人MUC1肽的25个氨基酸序列)作为**疫苗的能力。用二硬脂酰磷脂酰胆碱、胆固醇和二肉豆醇酰磷脂酰甘油(摩尔比3:1:25)中含有的单磷脂酰脂A(1%w/w)制备脂质体，然后与脂偶联和非偶联的MUC1肽结合。C57BL/6小鼠免疫分别采用肽相关脂质体、肽与无肽脂质体混合、脂肽单独免疫。结果表明，脂质体制剂对免疫应答有深远的影响。与物理相关的脂质体观察到强烈的免疫反应(抗原特异性t细胞细胞反应)，而与肽混合的无肽脂质体或单独的脂肽则没有。体液免疫反应受到关联性质的***影响，这可以通过表面暴露的肽脂质体诱导muc1特异性抗体来证明。因此可以通过调整脂质体药物传递系统来诱导优先细胞反应这提出了一个假设即不同的脂质体配方刺激不同的免疫途径。长循环脂质体载药供应
