与药物作用有关的心肌离子通道，心肌细胞通过各种离子通道对膜电位和动作电位稳态的维持而保持正常的功能。近年来，国外学者在人类心肌细胞离子通道特性的研究中取得了许多进展，使得心肌药理学实验由动物细胞模型向人心肌细胞成为可能。对离子通道生理与病理情况下作用机制的研究，通过对各种生理或病理情况下细胞膜某种离子通道特性的研究，了解该离子的生理意义及其在疾病过程中的作用机制。如对钙离子在脑缺血神经细胞损害中作用机制的研究表明，缺血性脑损害过程中，Ca2+介导现象起非常重要的作用，缺血缺氧使Ca2+通道开放，过多的Ca2+进入细胞内就出现Ca2+超载，导致神经元及细胞膜损害，膜转运功能障碍，严重的可使神经元坏死。膜片钳放大器系统（以下简称IPA系统）是高度自动化的膜片钳放大器系统，所有的功能均通过计算机软件完成。日本双分子层膜片钳单细胞
全细胞膜片钳记录(Whole-cellpatch-clamprecording)是一种早期且使用频繁的钳夹技术，相当于连续单电极电压钳夹记录，也就是说，全细胞记录类似于传统的细胞内记录，但具有更大的优势，如分辨率高、噪声低、稳定性好、细胞内成分可控等。全细胞记录技术测量一个细胞内所有通道的电流，记录过程中电极的溶液代替原生质的成分。虽然膜片钳记录技术相对于原来的单电极电压钳有了很大的进步，尤其是在单离子通道钳记录中，细胞或脑片的组织选择和实验溶液的制备仍然是非常重要的步骤。日本双分子层膜片钳单细胞解锁细胞秘密，膜片钳带您探寻离子通道的奥秘！
高阻封接问题的解决不仅改善了电流记录性能，还随之出现了研究通道电流的多种膜片钳方式。根据不同的研究目的，可制成不同的膜片构型。(1)细胞吸附膜片(cell-attachedpatch)将两次拉制后经加热抛光的微管电极置于清洁的细胞膜表面上，形成高阻封接，在细胞膜表面隔离出一小片膜，既而通过微管电极对膜片进行电压钳制，分辨测量膜电流，称为细胞贴附膜片。由于不破坏细胞的完整性，这种方式又称为细胞膜上的膜片记录。此时跨膜电位由玻管固定电位和细胞电位决定。因此，为测定膜片两侧的电位，需测定细胞膜电位并从该电位减去玻管电位。从膜片的通道活动看，这种形式的膜片是极稳定的，因细胞骨架及有关代谢过程是完整的，所受的干扰小。
膜片钳的应用范围：1.单离子通道(如钠、钾)的功能研究；2.心肌细胞离子通道研究（尤其与药物作用相关的）；3.常规与病理的离子通道作用机制研究；4.单细胞的形态与功能关系的研究；5.心血管药理学的研究；6.脑片膜片钳（证实了脑组织在体外也能存活并保持很好的活性状态，能使对脑细胞的研究更接近生理状态下的情况，可检验不同脑区间的神经通路与功能链接）；7.神经环路的研究（光遗传或化学遗传病毒载体表达的验证）；8.神经突触可塑性的研究。想要深入了解离子通道？膜片钳技术是您不可或缺的研究工具！
高阻密封技术还***降低了电流记录的背景噪声，从而大幅提高了时间、空间和电流分辨率，如10μs的时间分辨率、1平方微米的空间分辨率和10-12年的电流分辨率。影响电流记录分辨率的背景噪声不仅来自膜片钳放大器本身，还来自信号源的热噪声。信号源就像一个简单的电阻，其热噪声为σn=4Kt△f/R其中σn为电流均方差的平方根，k为玻尔兹曼常数，t为温度，△f为测量带宽，R为电阻值。可以看出，为了获得低噪声电流记录，信号源的内阻必须非常高。如果在1kHz带宽、10%精度的条件下记录1pA的电流，信号源的内阻应该大于2gω。电压钳技术只能测量内阻为100kω~50mω的大电池的电流，常规技术和制备无法达到所需的分辨率。用膜片钳技术，轻松捕捉离子通道的每一个细微动作！全细胞膜片钳技术
借助膜片钳技术，开启细胞膜离子通道的高精度研究之旅！日本双分子层膜片钳单细胞
不同的全自动膜片钳技术所采用的原理如PopulationPatchClamp技术∶同SealChip技术一样，完全摒齐了玻璃电极，而是采用PatchPlate平面电极芯片。该芯片含有多个小室，每个小室中含有很多1-2μm的封接孔。在记录时，每个小室中封接成功的细胞|数目较多，获得的记录是这些细胞通道电流的平均值。因此，不同小室其通道电流的一致性非常好，变异系数很小。美国Axon（MDS）公司采用这一技术研发出了全自动高通量的lonWorksQuattro系统，成为药物初期筛选的金标准日本双分子层膜片钳单细胞
