卵母细胞冷冻保存主要采用两种方法：慢速冷冻法和玻璃化冷冻法。相较于传统的慢速冷冻法，玻璃化冷冻法因其更高的解冻存活率和妊娠成功率而逐渐成为主流技术。玻璃化冷冻法的基本原理是将含有生物样本的溶液在极短的时间内（如几分钟内）冷却至液氮温度，使溶液在凝固点以下形成无冰晶的半固体或固体状态。这种方法避免了冰晶形成对细胞结构的破坏，从而减少了冷冻损伤。在卵母细胞冷冻保存中，玻璃化冷冻法通过优化冷冻保护剂的浓度和冷冻速率，使卵母细胞在冷冻过程中保持其结构的完整性。纺锤体的形成与消失是细胞周期中高度动态的过程。北京卵母细胞纺锤体卵质量评估
玻璃化冷冻技术因其快速冷冻和解冻的特点，在哺乳动物纺锤体卵冷冻保存中展现出巨大优势。该技术通过极快的降温速率和高浓度的冷冻保护剂，使细胞内溶液在冷冻过程中呈玻璃态而非结晶态，从而避免了冰晶对纺锤体的损伤。此外，研究者们还尝试将微流控技术、激光辅助冷冻等新技术应用于卵母细胞的冷冻保存中，以进一步提高冷冻效果。为了准确评估冷冻对纺锤体的影响，研究者们开发了多种纺锤体稳定性评估技术。例如，通过偏光显微镜观察纺锤体的形态变化；利用免疫荧光染色技术检测纺锤体相关蛋白的分布和表达；以及通过分子生物学方法检测纺锤体相关基因的转录和翻译水平等。这些技术的应用为深入研究冷冻过程中纺锤体的变化提供了有力支持。武汉辅助生殖纺锤体加热台纺锤体的一端连接着染色体，另一端则锚定在细胞两极。
纺锤体的完整性决定了染色体分裂的正确性。在有丝分裂前期，中心体被复制形成两个中心体，并逐渐分离，形成两个纺锤体。纺锤体的微管从中心体发出，与染色体上的着丝粒（kinetochore）结合。着丝粒是一组复杂的蛋白质结构，可以与微管的末端结合。当纤维束的微管末端与着丝粒结合时，纤维束开始缩短，将染色体拉向两端，实现染色体的精确分离。这一过程不仅确保了每个新细胞都能获得正确数量的染色体，还保证了遗传信息的稳定传递。
微管蛋白的突变和异常磷酸化是导致纺锤体功能障碍的主要原因之一。微管蛋白是构成微管的基本单元，其稳定性和功能对于纺锤体的组装和染色体的分离至关重要。微管蛋白的突变和异常磷酸化会影响微管的动态平衡，导致纺锤体的组装异常和染色体分离错误。纺锤体功能障碍会导致染色体不稳定，增加基因组的不稳定性。染色体不稳定会影响基因的表达和功能，导致细胞周期紊乱和细胞凋亡。在神经退行性疾病中，染色体不稳定会导致神经元的基因表达异常，进一步加剧神经元的损伤和死亡。 纺锤体的异常可能与人类衰老和疾病的发生有关。
Oosight影像分析系统采用液晶偏光成像技术，无需对卵母细胞进行染色，即可实时、清晰、高对比度地进行纺锤体结构和透明带成像，对ICSI、核移植操作、卵母细胞质量评价等有很好的辅助作用。
主要应用ICSI：在单精胞浆注射过程中定位初级卵母细胞，避免卵的破裂损伤，增强胚胎的发育潜能。卵评估：利用定量的分析数据对卵进行分级，改善对胚胎的选择。体外成熟评估：在未成熟卵催化（IVM）过程判断成熟期，判断依据采用的是准确的识别纺锤体，而非不准确的极体。质量控制：利用定量的分析数据对卵进行分级，改善对胚胎的选择。
核移植：显著提高核移植的成功率。由于在核摘除的过程可以清楚的看到核质，使得核移植的成功率增加了80%，并减少了线粒体DNA的摘除。卵冷冻研究：对冷冻的初级卵母细胞进行解冻前和解冻后的定量分析，从而判断卵的发育力，改善妊娠率。纺锤体研究：检测胚胎中纺锤体的发育过程，确定正常和非正常分裂率（只可用于搭配有培养箱的显微镜）。可以对染色体非正常的或非整倍体的胚胎成像，从而选择***的前体做PGD诊断。透明带研究：测量卵母细胞的透明带；准确测量纺锤体和透明带中分子排列方向的差别变化，判断纺锤体和透明带是否处于正常状态 纺锤体形成和功能的调控涉及多个信号通路。上海ICSI纺锤体胚胎发育
纺锤体在细胞分裂过程中与细胞骨架协同工作。北京卵母细胞纺锤体卵质量评估
在有丝分裂中，纺锤体负责将姐妹染色单体分离并牵引至细胞两极，形成两个遗传物质完全相同的子细胞。而在减数分裂中，纺锤体则负责将同源染色体分离并牵引至细胞两极，形成四个遗传物质相似的子细胞。这一过程实现了遗传信息的重组和配子的形成。其次，在有丝分裂中，纺锤体的形成和分裂过程相对简单，主要依赖于中心体的复制和分离以及微管的动态生长和缩短。而在减数分裂中，纺锤体的形成和分裂过程则更加复杂。在减数分裂Ⅰ的前期，同源染色体需要发生配对、联会、交换和交叉等过程，这些过程都依赖于纺锤体的微管网络。此外，在减数分裂Ⅱ中，姐妹染色单体的分离也需要纺锤体的牵引和定位。此外纺锤体在有丝分裂和减数分裂中的形态和大小也存在差异。在有丝分裂中，纺锤体通常呈现出较为规则的纺锤形状，而在减数分裂中，纺锤体的形态则更加多样化，可能呈现出不规则的形状或分叉的形态。 北京卵母细胞纺锤体卵质量评估
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