原代细胞的优势与不足细胞培养很好的补充了体内实验的不足，它让细胞功能和进程的研究更具可操作性。细胞系的一个缺点是它们往往与原始的组织有不一样的遗传和表型。相比之下，原代细胞保持了细胞在体内的许多重要标志和功能。原代细胞的生长：虽然原代细胞有诸多优点，但是获得高纯度的原代细胞是一个非常艰巨的过程。比起细胞系，原代细胞可谓是极其敏感，需要额外添加经典培养基所没有的营养。原代细胞要在专为每种细胞定制的特殊培养液中存活和生长。例如内皮细胞与上皮细胞或神经元营养需求就大为不同。因此需要特殊培养基。传统细胞培养基靠血清提供生长因子、脂类和其他未知成分供细胞生长。但高血清会导致原代细胞分化或助长成纤维细胞等污染。此外，使用血清还会顾虑费用增高和批次差异等问题。使用低血清或无血清的特殊成分培养基不仅可以避开这些问题，还能更好的促进原代细胞的生长。另外，将原代细胞接种在生理亲和性的基板上可以显著提高细胞贴壁率、生长状态和纯度。基因表达分析：基因表达直接影响细胞功能，基因表达分析对研究原代细胞起重要作用。传统的报告基因检测和cDNA芯片方法往往需要转染或大量高质量RNA。但是原代细胞是出了名的难转染。使得体外培养的脐静脉平滑肌细胞作为研究血管的模型细胞。裸鼠原代细胞实验
收藏查看我的收藏0有用+1已投票0细胞培养编辑锁定本词条由“科普中国”科学百科词条编写与应用工作项目审核。细胞培养（cellculture）是指在体外模拟体内环境（无菌、适宜温度、酸碱度和一定营养条件等），使之生存、生长、繁殖并维持主要结构和功能的一种方法。细胞培养也叫细胞克隆技术，在生物学中的正规名词为细胞培养技术。不论对于整个生物工程技术，还是其中之一的生物克隆技术来说，细胞培养都是一个必不可少的过程，细胞培养本身就是细胞的大规模克隆。细胞培养技术可以由一个细胞经过大量培养成为简单的单细胞或极少分化的多细胞，这是克隆技术必不可少的环节，而且细胞培养本身就是细胞的克隆。细胞培养技术是细胞生物学研究方法中重要和常用技术，通过细胞培养既可以获得大量细胞，又可以借此研究细胞的信号转导、细胞的合成代谢、细胞的生长增殖等。[1]中文名细胞培养外文名cellculture别名细胞克隆术语细胞培养技术地位生物技术中基础的技术常用培养基无钙、镁、离子溶液目录1分类2环境及条件▪环境因素▪营养条件3设施器材4一般过程5具体步骤6注意事项细胞培养分类编辑动物细胞培养高速冷冻离心机在所有的细胞离体培养中，困难的是动物细胞培养。内蒙古模式原代细胞技术具有多种原代细胞，包含人源细胞、大鼠细胞、小鼠细胞。
易操作原代细胞和细胞系的比较3.原代细胞的应用由于原代细胞生物学特性未发生很大改变，接近和反映体内生长特性，因此是：(1)研究生物体细胞的生长、代谢、繁殖提供有力的工具；(2)更好实现医诊治模式，实现个体化用药的目的。第二部分：原代细胞分离和培养技术原代培养的原理将动物机体的各种组织从机体中取出，经各种酶(常用胰蛋白酶/胶原酶)、螯合剂(常用EDTA)或机械方法处理，分散成单细胞，置合适的培养基中培养，使细胞得以生存、生长和繁殖，这一过程称原代培养。主要包括取材——分离——培养等3部分；在原代细胞应用较多的包括：组织（如实体瘤、皮肤等）、悬浮细胞的取材等。下面依次介绍：一、组织的取材病人自体的原代细胞由于更接近临床患者标本，可以更好实现医疗的诊治模式，实现个体化用药的目的。所以对病人自体细胞体外分离与培养十分必要。基本过程如下图所示：原代细胞的分离步骤备注：上图细胞为肉瘤患者的原代细胞具体步骤如下：1.在无菌条件下的冰上对新鲜离体的组织，剔除包膜及坏死组织，无菌PBS清洗3-5次；切成约1mm3组织块；2.加入2mmol的EDTA，摇匀后放置冰上约30-60min；3.离心，并加入胶原酶消化（含蛋白酶）；4.消化期间，置于37°培养箱。
细胞之间的促生长作用很小，也很难使细胞适应从体内的组织环境到被分散后进入生存环境的变化过程。如果接种的细胞密度过大，会导致营养物质供应不足，代谢废物积累较快需要经常换液和传代。2）适当增大原代培养接种的细胞密度，给培养的细胞提供更多的类似于在体内时细胞之间的相互作用，会极大提高原代培养的细胞在体外存活率。待细胞适应体外环境后进行传代培养时再以较低的密度接种和培养。3）尽快使接种的细胞贴壁，是决定培养能否成功的关键。可以在接种后先将培养瓶置培养箱内培养3h到5h，待细胞贴壁后，再补足培养液继续培养。3、悬浮型原代细胞1）必须保持细胞的悬浮状态。可以通过增加培养液的黏度来帮助细胞呈悬浮状态，如给培养液中加入低浓度的透明质酸复合物。在有搅拌装置的培养器皿内加入培养液是，以5ml为限度，否则搅拌时会产生气泡对细胞造成伤害。使用这种方式需注意勿使搅拌速度过快，否则即可使培养液溢出又容易造成污染。如果培养液的量在5ml以下，可以采用旋转瓶培养。给悬浮培养的细胞换液时要注意不要吸出细胞。2）能够进行悬浮培养的细胞，其生命力一般都比较旺盛，体外分裂增殖的速度较快，营养成分消耗大，换液时间隔一般较短。多数细胞伸展呈长梭形，胞浆丰富，有分枝状突起，细胞平行排列成单层或部分区域多层重叠生长。
每15min摇晃一次，消化时间根据组织来定，约1-2h；5.待大部分组织块消化成透明状时，用40μm的细胞滤网过滤细胞，收集；6.用培养基重悬，置于培养箱培养。常见问题解答：Q：为什么我取得原代织，分离的却不是细胞？A：取材时，我们要熟悉所需组织的类型和部位特征，选择细胞集中、活力较好的部分。避免结缔等正常组织。Q：若是细胞中混成纤维细胞，如何去除？A：成纤维细胞的去除对于细胞培养十分重要。由于成纤维细胞贴壁速度细胞快，可利用反复贴壁法使二者分离，进而达到成纤维细胞的目的。Q：为什么离心后，没有细胞分离出来？A：需要考虑消化酶的因素，由于组织较致密，胰酶无法消化，一般选用胶原酶，如胶原酶Ⅳ。若是组织十分致密可以再结合机械法，如研磨或者搅拌加速细胞分散。如下表为二者的区别：胶原酶胰酶来源细菌胰脏消化组织纤维多的硬组织软组织对细胞影响伤害小长时间有损伤作用力度缓和强注：胶原酶分为Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ、Ⅴ型以及肝细胞胶原酶，根据分离的组织类型需选择合适的胶原酶类型。Q：消化时间如何确定？A：具体的消化酶的量和消化时间可根据组织类型和多少进行调整。Q：消化之前为什么用EDTA?A：EDTA是一种非酶消化物，又称螯合剂，对一些组织。名称：人脐静脉血管平滑肌细胞 Human umbilical vein vascular smooth muscle cell 货号：PC-H-18103。江苏外包原代细胞外包
收到复苏好的贴壁细胞的处理方法。裸鼠原代细胞实验
冻存过程中保护剂的选用、细胞密度、降温速度及复苏时温度、融化速度等都对细胞活力有影响。[4]细胞培养具体步骤编辑一、细胞复苏将冻存细胞从液氮中取出后，在37℃水浴锅内不断摇动促进其融化。移入15ml离心管中，加入10ml预热的DMEM完全培养基，轻轻吹匀，离心，2000rpmX2min，弃上清液。加入10mlDMEM培养基清洗，弃上清液。加入10mlDMEM完全培养基，轻轻吹打，接种于10cm盘中，在含5%CO2的细胞培养箱中培养。二、细胞传代细胞密度达到80%~90%时．去培养基，10mlPBS清洗2次。加入3ml含0．25%EDTA的胰蛋白酶，放入细胞培养箱3min。加人1mlDMEM完全培养基终止胰酶消化，转移至15ml离心管。加入10mlPBS清洗细胞培养盘，转移至15ml离心管，2000rpmX2min，弃上清液。再加入10mlPBS（经高压灭菌，保存于40C），吹匀，吸取10微升进行计数，按照1×105/盘接种，在含5%CO2的细胞培养箱继续培养。三、细胞冻存细胞密度达到80%～90%时，去培养基，10mlPBS清洗2次。加入3ml含，放入细胞培养箱3min。加入lmlDMEM完全培养基终止胰酶消化，转移至15ml离心管。加入10mlPBS清洗细胞培养盘，转移至15ml离心管，2000rpmX2min，弃上清液。加入1ml冻存液（90%血清，10%DMSO），放入冻存盒内。裸鼠原代细胞实验
