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细胞转染实验的方法有哪些：1.脂质体法。中性脂质体是利用脂质膜包裹DNA，借助脂质膜将DNA导入细胞膜内。带正电的阳离子脂质体则不同，DNA并没有预先包埋在脂质体中，而是带负电的DNA自动结合到带正电的脂质体上，形成DNA-阳离子脂质体复合物，从而吸附到带负电的细胞膜表面，经过内吞被导入细胞。脂质体法始于1987年，此法的出现使得转染效率、转染的稳定性和可重复性较大提高。阳离子脂质体细胞毒性相对较高，对不同的细胞可能会干扰细胞的代谢。2.非脂质体转染 。较新的纳米聚合物转染试剂，如Entranster试剂，纳米材料，细胞毒性小，转染效率高，渐渐成为各大实验室的选择转染试剂。一般的瞬时转染 方法多采用脂质体法。厦门珠海细胞高效转染试剂

细胞转染效率低下的几个大坑：1.不注意细节在转染之前更换一次37℃预温的培养基，可提高转染效率。脂质体和DNA/RNA混合物应当一滴一滴地滴下来，从培养皿一边滴到另一边，边滴边轻摇培养皿，以确保均匀分布和避免局部高浓度。这些都是一些细枝末节，但是，如果不注意的话，也会造成转染效率低下。2.细胞状态不好细胞状态不好，会导致转染效率低下。一般进行转染的细胞应该处于对数生长期。如果是贴壁细胞的话，贴壁率应该在70-80%；如果是悬浮细胞的话，应该是6X105个/孔（24孔板），一般是转染前现在换液，转染前用无血清培养基或PBS洗细胞一次。转染的整个过程都不应该有物品。南京正规细胞高效转染试剂细胞铺板密度用于转染的较佳细胞密度根据不同的细胞类型或应用而异。

细胞转染实验注意事项：1.如为贴壁生长细胞，一般要求在转染前一日，必须应用胰酶处理成单细胞悬液，重新接种于培养皿或瓶，转染当日的细胞密度以70-90%（贴壁细胞）或2×106-4×106细胞/ml（悬浮细胞）为宜，较好在转染前4h换一次新鲜培养液。2.用于转染的质粒DNA必须无蛋白质，无RNA和其他化学物质的污染，OD260/280比值应在1.8以上。3.培养基中的血清在开始准备DNA和阳离子脂质体试剂稀释液时要使用无血清的培养基，因为血清会影响复合物的形成。其实，只要在DNA-阳离子脂质体复合物形成时不含血清，在转染过程中是可以使用血清的。

转染的注意事项：培养基中的物品物品，比如青霉素和链霉素，是影响转染的培养基添加物。这些物品一般对于真核细胞无毒，但阳离子脂质体试剂增加了细胞的通透性，使物品可以进入细胞。这降低了细胞的活性，导致转染效率低。所以，在转染培养基中不能使用物品，甚至在准备转染前进行细胞铺板时也要避免使用物品。这样，在转染前也不必润洗细胞。对于稳定转染，不要在选择性培养基中使用青霉素和链霉素，因为这些物品是GENETICIN选择性物品的竞争性克制剂。另外，为了保证无血清培养基中细胞的健康生长，使用比含血清培养基更少的物品量。 大多数已建立的细胞系都是非整倍体，原代培养包括了表达不同基因组合的细胞的混合物。细胞培养在实验室中保存数月和数年后会经历突变，总染色体重组或基因调控变化等而演化，这会导致和转染相关的细胞行为的变化。如果随时间发现这种变化，融化一管新鲜的细胞可能会恢复原先的转染活性。比如，新鲜融化的NIH 3T3细胞比传代8次的细胞表现出更高的转染效率，融化细胞的进一步传代并没有降低转染效率。因此，如果观察到转染效率降低，可以试着转染新鲜培养的细胞以恢复较佳结果。在现生命可续研究中，大部分的工作是利用基因功能研究来探索生命过程。

如何高效率实现细胞转染：转化、转染、转导几个名词是从事生命科学研究的初学者经常碰到的，也是让人容易混淆的。他们之间有什么区别和联系呢：转化(transformation)指将质粒或其它外源DNA导入处于感受态的宿主细胞（原核生物），并使宿主细胞获得新的表型的过程。转导(transduction)由噬菌体或细胞细菌介导的遗传信息转移过程称转导或传染（Infection）。转染(transfection)是指真核细胞主动或者被动导入外源DNA片段而获得新表型的过程。对于真核生物，转染就是原核生物中转化的同义词。转染技术转染是将外源遗传物质导入真核细胞的过程，是细胞和分子生物学研究的重要工具。在现生命可续研究中，大部分的工作是利用基因功能研究来探索生命过程，如何将目的基因导入细胞内是科学实验过程中不可缺少的实验技术，而细胞转染是完成这一过程的必需步骤。其可降解性对体内应用也具有重要的意义。石家庄正规细胞高效转染试剂厂家

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细胞转染之PEI 转染法：1.细胞分盘：通过胰酶消化收集细胞，用适当的完全培养基以 1×105 至 4×105细胞/cm2 的密度平铺细胞于 35 mm 培养皿上（根据实验需要选择培养皿，使细胞贴壁后所占面积达到培养皿总面积的 70－90％）。将细胞置于含 5％CO2 的 37℃温箱中孵育 8-24 h，当细胞贴壁完全后即可开始转染。转染前 2 h 换液（用 1.5 ml 无血清培养基置换旧的培养基）。注：PEI转染法对细胞生长有克制作用，在换液前细胞几乎不生长，所以需要密度比较大时做转染。2.制备PEI-DNA 混合物以 35 mm 组织培养皿用 240 μl 反应总体积为例。先在无菌EP管中加入120 μl 1×HBS,再加入质粒 DNA（总量 1-3 μg 为佳），混匀后加入等体积 PEI工作液，充分混匀后室温静置 20-30 min ，较后将这 240 μl 的PEI-DNA混合液逐滴加入上述单层细胞的细胞培养基中，轻轻摇动平皿混匀后置于含 5％ CO2的 37℃温箱孵育。厦门珠海细胞高效转染试剂

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